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肾缺血再灌注损伤(RIRI)动物模型具体步骤及方法

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肾缺血再灌注损伤(RIRI)动物模型具体步骤及方法

原型物种人

来源缺血再灌注,双侧肾动脉夹闭法

模式动物品系Balb/c小鼠,SPF级,雄性,周龄:4~6周,体重:20g~22g

实验分组随机分组:对照组,模型组,阳性药物组,受试药物组(3个浓度梯度组),15只每组 实验周期24h、72h

建模方法1 选取20-22g左右小鼠,术前禁食12h,自由饮水。 2 3%戊巴比妥钠(80mg/kg)腹腔注射麻醉,小鼠背部去毛,消毒备皮。 3 在背部脊椎旁0.5cm、肋骨下缘0.5cm处剪开皮肤及肌肉,可见到肾脏, 小心分离出两侧肾脏的肾动脉,迅速用动脉夹夹闭两侧肾动脉。 4 缺血45min后松开动脉夹,恢复血流,观察肾脏恢复情况。

5 分两层缝合开口,待小鼠清醒后,将其放回洁净笼具后放回饲养室饲养,定期观察小鼠状态及死亡情况并做好记录。 6 对照组不做缺血处理,其他操作相同。

7 分别取再灌注0h、3h、6h、12h、24h、72h六个时间点取材。麻醉小鼠,摘眼球取血,室温静置2h后于4℃3000r离心10分钟提取血清,放入-80冰箱冻存。同时取左肾组织留作病理标本,右肾组织分生标本。 应用可用于研究肾缺血再灌注损伤在临床预防和治疗中的作用

1. 血清生化指标检测: 取各时间点(0h、1h、3h、6h、12h、24h、72h)血清,检测血清BUN(尿素氮)和Scr(血肌酐)水平,评估肾功能。 2. 肾系数检测:

摘取双侧肾脏后,生理盐水冲洗,称重计算肾系数。 肾系数=双侧肾重(mg)/体重(g) 3.肾小管坏死的评分:

每张切片×200 倍镜下取外髓质部 10 个视野,按 0 = 正常,1 = 轻微损伤(受损肾小管< 5%), 2= 轻度损伤(受损肾小管 5 %~25 %), 3 = 中度损伤(受损肾小管 25 %~75 %) ,

4 = 重度损伤(受损肾小管> 75 %) 作半定量分析并计算其均值,作为肾小管坏死的评分指数。

4%多聚甲醛溶液固定48h。常规组织脱水、透明、浸蜡 、包埋。石蜡切片进行HE染色和PAS染色。

对照组小鼠肾小球、 肾小管及肾间质结构基本正常。在 模型组组, 随着再灌注时间的延长呈现不同程度的肾脏病理改变, 可见肾小管上皮细胞浑浊肿胀,

出现水样或空泡变性,刷状缘消失,部分肾小管上皮细胞凝固性坏死、脱落,腔内可见管型,并可见间质水肿,间质内灶性炎症细胞浸润,肾小球病变不明显。

ELISA 法检测血清 TNF-α、IL-6 含量, 模型组小鼠血清 TNF- α 和 IL- 6 含量在各时间点均显著高于对照组,其中24h为最显著。

肾缺血再灌注损伤(RIRI)动物模型具体步骤及方法

肾缺血再灌注损伤(RIRI)动物模型具体步骤及方法原型物种人来源缺血再灌注,双侧肾动脉夹闭法模式动物品系Balb/c小鼠,SPF级,雄性,周龄:4~6周,体重:20g~22g实验分组随机分组:对照组,模型组,阳性药物组,受试药物组(3个浓度梯度组),15只每组实验周期24h、72h
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